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免疫组化实验操作流程

发布时间:2025-05-06 点击次数:44

一、实验流程

  1. 样本制备

    • 石蜡切片:需经脱蜡(二甲苯梯度处理)和水化(梯度乙醇至水)。

    • 冰冻切片:直接固定(4%多聚甲醛),避免长时间固定导致抗原遮蔽。

  2. 抗原修复

    • 热修复:常用柠檬酸钠缓冲液(pH 6.0)或EDTA缓冲液(pH 9.0),微波或高压加热。

    • 酶消化:胰蛋白酶或胃蛋白酶处理,适用于某些膜蛋白。

    • 方法选择

    • 关键:根据抗体说明书选择修复条件,避免过度修复导致组织破坏。

  3. 阻断内源性过氧化物酶

    • 3% H₂O₂室温孵育10-15分钟(HRP系统需此步骤)。

  4. 封闭

    • 使用5% BSA或正常血清(与二抗同源)封闭30分钟,减少非特异性结合。

  5. 一抗孵育

    • 稀释一抗于封闭液中,4℃过夜或室温1-2小时。需优化浓度(常用1:100-1:500)。

  6. 二抗孵育

    • HRP或荧光标记二抗,室温孵育30-60分钟。避免光照(荧光标记)。

  7. 显色

    • HRP系统:DAB显色(显微镜下控制时间,及时终止)。

    • 荧光系统:直接封片观察,避光保存。

  8. 复染与封片

    • 苏木素复染细胞核(1-2分钟),分化返蓝后脱水、透明、中性树胶封片。

  9. 显微镜观察

    • 明场观察DAB显色(棕色)或荧光显微镜检测特定波长信号。


二、关键注意事项

  1. 对照设置

    • 阳性对照:已知表达靶蛋白的组织。

    • 阴性对照:不加一抗或同型IgG,排除非特异性染色。

  2. 常见问题解决

    • 背景高:封闭不充分、一抗浓度过高、洗涤不彻底。增加封闭时间或降低抗体浓度。

    • 信号弱:抗原修复失败、抗体失效、显色时间不足。检查修复条件及抗体活性。

    • 脱片:烤片时间不足(石蜡切片需60℃烘1小时以上),或洗涤过猛。

  3. 试剂保存

    • 抗体分装后-20℃保存,避免反复冻融。荧光二抗避光保存。

  4. 安全操作

    • DAB为致癌物,需在通风橱中操作并佩戴手套。


三、优化建议

  • 抗体滴定:预实验确定最佳稀释度。

  • 多色荧光IHC:选择光谱不重叠的荧光标记二抗,避免串色。

  • 自动化平台:高通量实验可考虑自动化染色仪提高一致性。


通过系统优化实验条件和严谨操作,免疫组化可成为研究蛋白定位与表达的强有力工具。遇到问题时,建议从样本处理、抗体效价、试剂新鲜度等环节逐步排查。


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